El diagnóstico de infecciones fúngicas cutáneas mediante microscopía directa y cultivo representa un desafío debido a la baja sensibilidad y al prolongado tiempo de procesamiento, sobre todo de los cultivos. Sin embargo, este escenario puede presentarse solamente en lugares que no tiene capacidad de usar PCR cuantitativa para el diagnóstico de dermatomicosis.
Argente-Colàs y colaboradores del Hospital Universitario de Navarra en Pamplona, España, investigaron la identificación molecular de hongos dermatofitos y de Candida albicans en muestras de piel y de uñas utilizando el ensayo qPCR NovaplexTM Dermatophyte. El desempeño fue bueno con una tasa global de concordancia de 94,1% en comparación con el ensayo EurobioPlex Dermatophytes. Se detectaron discrepancias solamente en 5,9% de los casos (59/998); la mayoría de éstos (62,7%) se confirmaron en última instancia como verdaderos positivos mediante el ensayo NovaplexTM Dermatophyte, mientras que 10,2% fueron resultados falsos negativos. Por el contrario, la comparación entre el ensayo de qPCR y el cultivo no mostró resultados falsos negativos para Candida albicans, lo que sugiere una alta especificidad.
Aunque los ensayos de qPCR demuestran un mejor desempeño en comparación con los métodos convencionales para la detección de hongos dermatofitos en muestras de piel y de uñas, los autores señalaron algunas limitaciones, como la escasa validación clínica y, por lo tanto, aconsejan realizar cultivos, además de qPCR. Además, el ensayo NovaplexTM Dermatophyte identifica Candida albicans, especies de Microsporum, Epidermophyton floccosum, complejo Trichophyton rubrum, complejo Trichophyton mentagrophytes y Trichophyton tonsurans en un único pocillo de reacción. Por lo tanto, este ensayo no puede detectar otros posibles patógenos, como especies de Candida no albicans y hongos filamentosos no dermatofitos, lo que sustenta aún más la necesidad del cultivo.
Figura 1. Onicomicosis de primer dedo de pie izquierdo. Imagen cortesía de Dr. Bassey Ekeng